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工作日8:30-17:30

Wako-Bambanker无血清细胞冻存液,无需程序降温,-80℃长期保存!

 二维码 442
发表时间:2015-06-08 09:15作者:诺扬生物

关于WAKO

英文全名:Wako Pure Chemical Industries, Ltd.中文全名:日本和光纯药工业株式会社,成立于1922年,是全球一流的试剂制造厂商,以其高品质的试剂闻名世界。成立九十多年一直致力于高质量的试剂及药业的生产与开发,所生产的各类产品均获得ISO9002 认可。“Wako”系列试剂涵盖了全面的生物化学、分析化学、有机化学、环境分析、食品.医药品分析、高纯度及认证标准品等多类,约有50万种试剂。

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传统的细胞冻存遵循缓冻速融原则,细胞+DMSO+血清,然后-4度30分钟—— -20度1-2小时—— -80度过夜——沉入液氮,或者使用程序降温盒。

Wako旗下两款无血清即用型细胞冻存液无需程序性降温,可在-80℃长期保存细胞。节省血清、节省购买程序降温和液氮所需的昂贵费用,最关键的可以节省您的宝贵实验时间!


BambankerTM无血清细胞冻存液(收集细胞,加入产品后-80长期保存或-80℃过夜后置于液氮中保存

   ● BambankerTM Direct 无血清培养基(无需离心收集细胞)


货号品名规格保存有效期
302-14681BambankerTM无血清细胞冻存液120ml2-8℃2年
306-14684BambankerTM无血清细胞冻存液5*20ML2-8℃2年
306-95921BambankerTM Direct 无血清培养基20ML2-8℃1年



1、BambankerTM无血清细胞冻存液

产品特点     

       * 无需程序性降温,直接使用

       * 可-80℃或液氮中长期冻存

      * 即用型细胞冻存液    

       * 无血清,成份确定,避免由支原体、病毒、朊病毒及其他病毒颗粒引发的污染

       * 产品经无菌检测,符合药典

      * 适用于肿瘤细胞和常规细胞,有研究表明同样适合各类敏感细胞,如ES细胞、原代细胞

       * 高复苏率(请见对比图效果)   

操作流程:

①收集对数生长期的细胞(5 x 105 ~ 1 x 107);

②用1ml BambankerTM重悬细胞,置于冻存管中,无需预冷,直接-80℃或液氮中长期冻存。

③用恒温箱或者水浴锅快速复苏细胞。

   * 细胞必须处于对数生长期(建议对数期,复苏率会更高)

操作流程图示

201601291331459442.jpg

无菌检测:

内毒素:生色底物法

支原体:荧光抗体法

真菌和细菌:依据药典

(可索取无菌检测检验证书)


BambankerTM 与其他相关产品比较:

201601291331587399.jpg



应用


低温冻存实验证明以下细胞保存完好


3T3‐L1(小鼠前脂肪细胞系)

A431(人扁平上皮癌细胞系)

BAEC(牛主动脉血管内皮细胞系)

Balb/3T3(小鼠成纤维细胞系)

C2C12(小鼠骨骼肌细胞系)

Daudi(人 B细胞系)

ECV304(人脐静脉内皮细胞系)

H295R(肾上腺皮质细胞)

HEK293(人胎儿肾细胞系)

HEK293T(人胎儿肾细胞系)

HeLa(人子宫颈癌细胞系)

HeLa S3(人子宫颈癌细胞系)

HepG2(人肝癌细胞系)

HFF(人正常成纤维细胞系)

Huh7(人肝癌细胞系)

Jurkat(人白血病T细胞系)

K562(人慢性骨髓性白血病细胞系)

KATOIII (人胃癌上皮细胞系)

KLM‐1(人胰腺癌细胞系)

MDCK(犬肾小管上皮细胞系)

MEF(小鼠胚胎成纤维细胞)

NIH3T3(小鼠胎儿皮肤细胞)

OKT4(小鼠杂交瘤细胞)

OP9(小鼠骨髓基质细胞)

P3U1(小鼠骨髓瘤细胞系)

PANC‐1(人胰腺癌细胞系)

PC12(大鼠源肾上腺嗜铬细胞瘤)

RPE(人细膜上皮细胞系)

SNL(小鼠胚胎成纤维细胞)

TSU‐Pr1(人前列腺癌细胞系)

Vero(非洲绿猴肾细胞系)

human γδT cells (人γδT细胞)

human B cell line (人B细胞系)

猴B细胞系

人外周血活化淋巴细胞

永生化人肌肉细胞

小鼠脾脏活化淋巴细胞

小鼠ES细胞系

人胃上皮细胞


  ES细胞(小鼠)使用实例。
  T.Hikichi,et al; Differentiation Potential of Parthenogenetic Embryonic Stem Cells Is Improved by Nuclear Transfer, Stem Cells, 2007, 25, 46-53



2、BambankerTM Direct 无血清培养基(无需离心收集细胞)

产品特点:

本品不需要复杂的离心步骤收集细胞,只需要往养有细胞的培养基内加入等量的本产品,再分装到冻存管,放入-80℃或液氮中长期冻存

①不需冻存前预处理,操作简便;   ②不需稀释直接使用; ③无需分步降温,直接使用;

④可快速、长期冻存细胞(-80℃或液氮)                 ⑤不含血清

流程图示:

201601291332174327.jpg


BambankerTM参考文献(部分)

Bambanker Publications   List

00001. Hikichi T., et al.: Differentiation Potential of Parthenogenetic Embryonic Stem Cells Is Improved by Nuclear Transfer, Stem Cells, 25: 46-53 (2007).


00002. Thuy BH, et al.: Essential role of paternal chromatin in the regulation of transcriptional activity during mouse preimplantation development. Reproduction, 141: 67-77 (2011).

00003. Saeki K. et al.: High Efficiency Production of Subculturable Vascular Endothelial Cells from Human Embryonic Stem Cells, Cloning and Stem Cells, 4: 509-22 (2009).

00004. Takata Y. et al.: Generation of iPS cells using a BacMam multigene expression system. Cell Struct Funct., 36(2): 209-222 (2011)

00005. Zaidi S. et al.: Runx2 deficiency and defective subnuclear targeting by pass senescence to promote immortalization and tumorigenic potential. PNAS., 104(50): 19861-19866 (2007)


00006. Miono S., et al.: Characteristics and Function of Cryopreserved Bone Marrow-Derived Endothelial Progenitor Cells. Annals of Thoracic Surgery., 85: 1361-6 (2008)


00007. Hatoya S., et al.: Effect of co-culturing with embryonic fibroblasts on IVM, IVF and IVC of canine oocytes, Journal of Theriogenology,66: 1083-1090(2006)


00008. Shimizu Y. et al.: Impaired Tax-specific T-cell responses with insufficient control of HTLV-1 in a subgroup of individuals at asymptomatic and smoldering stages: Cancer Sci., 100 (3): 481-9 (2009)


00009. Sato D., et al.,: Tonsillar TLR9 expression and efficacy of tonsillectomy with steroid pulse therapy in IgA nephropathy patients.,Nephrology Dialysis Transplantation, (2011)

T-Cell

00001. Park HS, et al.: Bone marrow T Cells are superior to splenic T cells to induce chimeric conversion after non-myeloablative bone marrow transplantation, Korean J. Intern Med., 24 (3): 252-262 (2009)


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00003. Lee SY, et al.: Effects of Cryopreservation of Intact Teeth on the Isolated Dental Pulp Stem Cells, Journal of Endodontics, 36 (8): 1336-1340 (2010)


00004. Huang MS, et al., Effects of transportation time after extraction on the magnetic cryopreservation of pulp cells of rat dental pulp.Journal of Dental Sciences, 6(1): 48-52 (2011))

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00007. Mieno S., et al., Effects of diabetes mellitus on VEGF-induced proliferation response in bone marrow derived endothelial progenitor cells. J. Card Surg., 25 (5): 618-25 (2010)


00008. Oshima N., et al., Optimized method for culturing outgrowth endothelial progenitor cells, inflammation and Regeneration, 31 (2): 219-227 (2011)


0009. Liu DG et al, Relation between human decay-accelerating factor (hDAF) expression in pig cells and inhibition of human serum anti-pig cytotoxicity: value of highly expressed hDAF for xenotransplantation, Xenotransplantation, (1): 67-73 (2007)


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